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细胞焦亡作为机体重要的天然免疫反应,在拮抗和清除病原菌感染中发挥关键作用。当革兰氏阴性菌侵入宿主细胞后,其外膜的重要病原分子模式LPS(脂多糖,也称内毒素)会被宿主细胞内的天然免疫受体caspase-4/5/11识别,LPS激活的caspase-4/5/11会进一步切割活化焦亡蛋白GSDMD释放其膜打孔活性,导致细胞焦亡,激发宿主的抗菌炎症反应。同时,细菌也采用了多种策略来逃避宿主的免疫防御,例如通过独特的III型分泌系统向宿主细胞“注入”专门的效应蛋白,干扰宿主的免疫防御通路。
2021年,北京生命科学研究所邵峰团队发现痢疾杆菌(Shigella)分泌的效应蛋白OspC3可以特异识别宿主细胞内的天然免疫受体caspase-4/11,通过催化caspase酶活中心的关键精氨酸发生一种全新的ADP-riboxanation翻译后修饰使caspase-4/11失活,阻断其活化下游GSDMD介导的细胞焦亡免疫防御。然而效应蛋白OspC3是如何特异地识别宿主靶标caspase-4/11,又是如何催化新颖的ADP-riboxanation修饰拮抗细胞焦亡的精确分子机理等关键科学问题有待进一步回答。
近日,中国科学院生物物理研究所王大成/丁璟珒课题组和邵峰团队合作,在 Nature Structural & Molecular Biology 期刊发表了题为:Structural mechanisms of calmodulin activation of Shigella effector OspC3 to ADP-riboxanate caspase-4/11 and block pyroptosis 的研究论文。
该研究揭示了效应蛋白OspC3利用宿主细胞的钙调蛋白(calmodulin,CaM)作为辅助因子激活其酶学活性,特异地识别宿主靶标caspase-4/11并催化全新的精氨酸ADP-riboxanation修饰,阻断宿主细胞caspase-4/11-GSDMD焦亡通路的完整分子机理。

研究人员发现OspC3可以有效地对静息状态未发生自剪切的caspase-4/11和细菌LPS激活后发生自剪切的caspase-4/11两种形式进行修饰,但是激活形式的caspase-4/11活性中心如果被模拟底物切割位点四肽序列的共价抑制剂zVAD不可逆地占据,会极大地削弱OspC3对caspase-4/11的修饰,这表明底物非结合状态的caspase-4/11,不论激活与否都是OspC3的底物。
研究人员发现,ADP-核糖基特异性结合蛋白Af1521可与修饰后的caspase-4/11产物形成稳定的1:1复合物,通过解析Af1521与caspase-4被修饰后产物的复合物的高分率晶体结构,研究人员清晰地观察到ADP-riboxanation修饰的精确化学结构,caspase-4修饰位点R314的侧链胍基脱去一个末端Nω原子后与来自NAD+的ADP-核糖基核糖环上的C1原子和C2位羟基分别连接,形成了一个全新的五元恶唑烷环,该结果为精氨酸ADP-riboxanation这种全新的翻译后修饰提供了直接的结构证明。
OspC3及其所属的细菌效应蛋白家族具有典型的双结构域特征,其N端结构域和任何已知的蛋白质没有序列同源性,而C端包含一个保守的ankyrin-repeat结构域(ARD),这类结构域通常介导蛋白质相互作用,因此推测该结构域是OspC3的底物识别结构域。研究人员进一步通过解析OspC3 ARD结构域与caspase-4底物复合物的晶体结构,确定了OspC3 ARD结构域通过一系列氢键网络和疏水作用特异地招募宿主靶标caspase-4/11。
在体外重组OspC3修饰caspase-4/11的酶活实验中,研究人员发现OspC3需要几乎与底物蛋白caspase-4/11相当的量才能实现对底物的完全修饰,这有悖于酶催化底物反应高效性的经典认识。通过免疫共沉淀结合质谱的方法,研究人员鉴定出宿主的钙调蛋白CaM以Ca2+-free的形式与OspC3形成稳定的二元复合物,极大提高了OspC3的催化效率。研究人员解析了OspC3与CaM二元复合物的高分辨率晶体结构,发现Ca2+未结合状态的CaM通过两个亚结构域分别以广泛的疏水作用牢牢抓住OspC3的N端结构域,而OspC3的N端结构域呈现出经典Rossmann折叠构象,与已知的ADP-核糖基转移酶结构域具有相似的结构特征和保守的NAD+结合基序。
为了进一步阐明OspC3利用NAD+作为供体催化caspase-4/11的精氨酸发生ADP-riboxanation修饰的完整酶学机理,研究人员解析了OspC3-CaM-caspase-4三元复合物及其与2'-F-NAD+(非水解型NAD+类似物)的四元复合物晶体结构,发现OspC3的N端的酶活中心通过酸性氨基酸D231固定caspase-4活性中心R314侧链胍基的末端Nω原子,使ADP-核糖基C1位靠近R314胍基的Nδ原子,从而利于NAD+烟酰胺基团的离去和在修饰位点R314 Nδ原子上发生第一步经典的ADP-核糖基修饰;而酶活中心的另一个酸性氨基酸D177则负责激活ADP-核糖基C2位的羟基亲核进攻R314侧链胍基C原子发生脱氨反应,使精氨酸侧链胍基和ADP-核糖基团形成一个恶唑烷环。研究人员将结构研究的发现利用定点突变的方法在生化、细胞和Shigella感染小鼠三个层面进行了验证,完整地阐明了OspC3利用宿主辅因子CaM特异地对caspase-4/11进行精氨酸ADP-riboxanation修饰的分子机理。

该研究通过一系列三维结构分析与功能实验验证,揭示了痢疾杆菌效应蛋白OspC3特异地识别宿主天然免疫受体caspase-4/11,并利用宿主钙调蛋白CaM作为辅因子催化全新的精氨酸ADP-riboxanation修饰,阻断宿主细胞caspase-4/11-GSDMD焦亡防御通路的完整分子机理,也为ADP-riboxanation这种全新的翻译后修饰的酶学反应机理提供了全面深入的理解,为进一步寻找和开发新型抗菌药物或细菌减毒疫苗提供了新策略。
论文链接:
https://www.nature.com/articles/s41594-022-00888-3
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