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临床资料
患者男,67岁,因右腮腺区偶发疼痛,遂发现有一“核桃大”肿物,于2023年2月就诊我院,腮腺CT平扫+增强提示:右侧腮腺体积增大,其内密度不均,深部区类圆环形强化灶,当日在B超介入下穿刺置管引流,因未见明显异常分泌物,建议观察随诊。后因肿物渐大成“鸡蛋”大小、并自感疼痛加重4月再次就诊,完善所有系列检查无异常后手术切除。
大体检查
灰黄灰红色组织一块,大小5.0*4.3*2.5cm,切开见灰白色结节,大小约3.0*2.0*1.5cm,质地硬。
镜下所示
HE:
镜下肿瘤组织与腮腺组织分界清(图1)、表现片状弥漫生长,细胞呈卵圆形、胖梭形,胞质丰富呈弱酸性,胞界清晰(图2),有空泡状染色质和明显的核仁,细胞粘附性差、核异形显著,核分裂像易见(图3),肿瘤细胞间可见散在淋巴细胞、极少量浆细胞和组织细胞。
图1 肿瘤分化差,呈弥漫片状排列,与周围腮腺分界尚清(HEx100)
图2 肿瘤胞浆丰富、弱嗜酸性,呈卵圆形、胖梭形(HEx200)
图3 肿瘤有空泡状染色质和明显的核仁,细胞粘附性差、核异形显著,核分裂像易见(HE x400)
免疫组化:
图4 肿瘤 AE1/3(-);腮腺腺体上皮(+)(SP x100)
图5 S100弥漫阳性(SP x200)
图6 CD56 弥漫性阳性 (SP x200)
图7 Langerin (-)(SP x100)
最终诊断
结合HE及免疫组化结果示交指状树突状细胞肉瘤。
讨论
交指状树突状细胞肉瘤(IDCS)又称指突状网织细胞肉瘤、指突状细胞肉瘤、交错树突细胞肉瘤、并指树突细胞肉瘤,为一种罕见的淋巴树突细胞来源的恶性肿瘤。具有恶性侵袭生物学行为,临床表现多样但缺乏特异性,多数以无痛性淋巴结肿大为首发症状,查阅文献,结外IDCS报道多在肝脏、结肠、鼻腔、胸膜等部位[1-2]。
临床特征
交指状突树突细胞来源于骨髓造血组织,位于淋巴组织T细胞区[3],是抗原提呈细胞的一种。IDCS被定义为一群具有IDC表型特征的梭形至卵圆形细胞的一种极其罕见恶性增生性疾病。IDCS发病多在成年人(中位年龄51.4岁),男性>女性(比例约19∶12),也有儿童病例(最小年龄8个月)报道[4]。首次报道IDCS是在1981年[5],至今病例统计不超过百例,而原发腮腺的更加罕见。IDCS多发生在淋巴结内(单发、多发均有),原发在淋巴结内的IDCS仅表现无痛性淋巴结肿大,而原发在结外的IDCS则表现多样。如原发脾脏的IDC会表现腹部闷胀感,原发小肠的IDCS会表现恶心、呕吐,原发纵隔的IDCS会表现咳嗽、咯血痰等压迫症状,其症状的表现可能与首发脏器自身功能相关,我院这例原发腮腺的IDCS仅为腮腺区偶尔不适,并无发热、乏力、消瘦等恶病质的肿瘤消耗症状。
镜下特征
此例大体是境界尚清楚的肿块,切面灰白色,镜下肿瘤表现片状弥漫生长,细胞呈卵圆形、胖梭形,胞质丰富呈弱酸性,胞界清晰,有空泡状染色质和明显的核仁,细胞粘附性差、核异形显著,核分裂像易见,肿瘤细胞间可见散在淋巴细胞、极少量浆细胞和组织细胞等。
免疫组化特征
免疫组化表型:S100(+)(图5),CD68(+),CD56(+)(图6),p53(弱+),SOX 10(+),Ki-67(+60%);AE1/3(-)(图4),HMB-45(-),TTF-1(-),Napsin A(-),CD21(-),CK 8/18(-),LCA(-),CD163(-),CD34(-),Melan A(-),PRAME(-),Langerin(-)(图7),CD1a(-),CD35(-),CK 7(-),CK 20(-),Villin(-)。
分子遗传学特征
最新文献报道在一例淋巴结的IDCS 中发现BRAF-V600E突变[11-12],在肝脏原发的IDCS中首次发现ERBB2基因的错义突变,本例我们也建议患者行基因检测,明确有无相关突变便以行相应的肿瘤免疫生物治疗。
治疗和预后
回顾IDCS的文献,IDC的发病原因及机制尚未明确,有学者认为IDCS与EB病毒或人类疱疹病毒有关,也有学者分别探讨了 IDCS 与CLL、IDCS 与低级别 B 细胞淋巴瘤之间的转化关系和相关性研究 [7] ,但均未被证实,故目前尚无标准治疗方案,现多以外科手术完整切除为首选方案。IDCS生物学表现从惰性到侵袭性的病例报道均是个案报告,演进过程也不可预测,临床治疗尚缺乏大宗样本的临床研究资料可供借鉴,因此术后辅以放疗能否延长生存期、以及术后化疗疗效均不确定,患者的预后也各不相同,局限性IDCS的平均生存期7个月,转移性IDCS的平均生存期5个月,且约三分之一的IDCS有远处转移的倾向[8-9]。现报道的临床治疗方案是淋巴结内采取非霍奇金淋巴瘤的化疗方案,结合患者自身情况辅以放疗,有报道用ABVD方案治疗6个月达到完全缓解的个案[10],但大多数效果均不理想;结外发现的原发IDCS多以手术完整切除为首选方案,一些病例也应用了辅助化疗,但作用尚不确定,故对IDCS目前治疗方案以及放化疗治疗无统一标准。我院此例患者术后一周PETCT影像报告:结合病史,右腮腺区肿物切除术后,右腮腺FDG代谢不同程度增高、右颈部淋巴结FDG代谢增高,符合恶性病变伴右颈部淋巴结转移征象,余部位未见明显异常FDC摄取增高。临床建议患者行放化疗巩固治疗,患者自愿选择观察保守治疗,不愿放化疗,电话随访(每隔三月)至今,状况一般。
鉴别诊断
1、原发腮腺的癌,免疫组化需表达上皮标记,如AE1/3、EMA等
2、恶性黑色素瘤,瘤细胞镜下具有明显的核仁、差的粘附性,组织形态学表现像癌又像肉瘤,免疫组化弥漫表达HMB45、Melan-A、PRAME、S-100等,上述标记至少两种同时表达方可诊断,本例仅S-100(+),不支持恶性黑色素瘤。
3、朗格汉斯细胞肉瘤(Langerhans cell satcoma,LCS),肿瘤细胞呈圆形、卵圆形,细胞胞质丰富,细胞核多呈马蹄形/肾形,具有核沟和核切迹,肿瘤背景多见多核巨细胞和嗜酸性粒细胞,瘤细胞免疫标记表达CDla、Langerin和CD68,此例IDCS上述标记均不表达可与LCS鉴别
4、间变性大细胞淋巴瘤:镜下瘤细胞相似IDCS,细胞异形性大、核怪异,免疫标记表达CD30、CD45、EMA和间变性淋巴瘤激酶。
5、滤泡树突细胞肉瘤(FDCS): FDCS在组织形态上与IDCS重叠最多,瘤细胞多呈梭形合体状,细胞均一且少见细胞多形性,免疫组化表达CD21、CD23、CD35等,此例的免疫组化均不支持FDCS。排除上述鉴别诊断,此例病理诊断结果为交指状树突状细胞肉瘤。
从上述鉴别诊断中可见组织学虽是评估IDCS的诊断基础,免疫组化却是确诊IDCS的重要辅助方法,这与IDCS的疾病起源相关,IDCS源于免疫系统中抗原提呈细胞的恶变,而抗原提呈细胞的种类繁多且组织形态多相似。例如,树突状细胞就包括滤泡树突网状细胞、指状树突网状细胞、朗格汉斯细胞、面纱细胞,所以在WHO造血和淋巴组织肿瘤的分类中,就将组织树突细胞来源的恶性肿瘤按此分为组织细胞肉瘤(HS)、朗格汉斯细胞增多症(LCH)、朗格汉斯细胞肉瘤(LCS)、滤泡树突细胞肉瘤(FDCS)和 IDCS[6]。假若遇到免疫组化也不能明确的病例,无法证实肿瘤起源哪种组织树突细胞,借助电镜辅助诊断也是一种选择,IDCS在电镜下胞内可见溶酶体散在分布,不含 Birbeck 颗粒,肿瘤细胞的指状突起呈现镶嵌排列且无桥粒连接。
综上所述,因IDCS的生物学行为表现多样,可由良性表现到因肿瘤的广泛播散所导致的迅速致死性的表现,使IDCS预后难以预测,可靠的预后因素目前尚不统一。故IDCS组织学病理特征似乎并不能准确提示患者预后,综合现有资料分析,常规判断与肿瘤侵袭性行为相关的肿瘤坏死、细胞核的多形性和易见的核分裂像在IDCS上显示并不相互关联,故期待大宗IDCS病例的研究可以给予IDCS循证医学证据支持。
参考文献:
[1] Ohtake H, Yamakawa M. Interdigitating dendritic cell sarcoma and follicular dendritic cell sarcoma: histopathological findings for differential diagnosis[J]. J Clin Exp Hematop, 2013,53(3):179-184.
DOI:10.3960/jslrt.53.179
[2] Hutter G, Kothbauer KF, Tzankov A, Hofer S. Intracranial Interdigitating Dendritic Cell Sarcoma. Neurosurgery. 2015,77(6):E979-83.
DOI:10.1227/NEU.0000000000000925.
[3]Zhu Y,Qiu T,Zhang H ,etal.[Clinicopathological characteristics and differential diagnosis of interdigitating dendritic cell sarcoma].[J]. Zhonghua zhong liu za zhi [Chinese journal of oncology],2019,41(6):449-453.
DOI:10.3760/cma.j.issn.0253-3766.2019.06.010
[4]王艳丽,郑玉萍,苏丽萍,等.指状突树突细胞肉瘤综合分析[J].肿瘤研究与临床, 2017,29(2):120-123.
DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2017.02.012
[5] Pan M ,Gong Q ,Fan Q ,etal.[Interdigitating dendritic cell sarcoma/tumor: a clinicopathologic study].[J].Zhonghua Bing LI Xue Za Zhi Chinese Journal of Pathology,2014,43(2):99-102.
DOI:10.3760/cma.j.issn.0529-5807.2014.02.006
[6]朱玥璐,邱田,张海峰,等.指状突树突细胞肉瘤的临床病理特征和鉴别诊断[J].中华肿瘤杂志,2019,41(6):449-453.
DOI:10.3760/cma.j.issn.0253-3766.2019.06.010
[7] Perkins SM,Shinohara ET.Interdigitating and follicular dendriticcell sarcoma.A SEER analysis[J].American Journal of Clinical Oncology,2013,36(4):395—398.
DOI:10.1097/COC.0b013e31824be22b
[8]Muhammed A, Ahmed ARH, Maysa H, Mohamed AES, Abd-ElLateef AA-E, Elnakib E. New insights inside the interdigitating dendritic cell sarcoma-pooled analysis and review of literature. Ann Hematol. 2019,98(12):2641-2651.
DOI:10.1007/s00277-019-03824-6
[9]王艳丽,郑玉萍,苏丽萍,等.指状突树突细胞肉瘤综合分析[J].肿瘤研究与临床, 2017,29(2):120-123.
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[10]Mayer J U , Lamiable O ,Hilligan K L , etal.Homeostatic IL-13 in healthy skin directs dendritic cell differentiation to promote TH2 and inhibit TH17 cell polarization. Nat Immunol.
, 2021,22(12):1538-1550.
DOI:10.1038/s41590-021-01067-0
[11]Montesinos P,Recher C,Vives S, etal. Ivosidenib and Azacitidine in IDH1-Mutated Acute Myeloid Leukemia[J]. New England Journal of Medicine,2022,386(16): 1519-1531.
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[12]Guo C , Ran Q , Sun C , etal. Loss of FGFR3 Delays Acute Myeloid Leukemogenesis by Programming Weakly Pathogenic CD117-Positive Leukemia Stem-Like Cells[J]. Frontiers in Pharmacology,2021,11:632-809.
DOI:10.3389/fphar.2020.632809
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