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1. 病史
男性,39岁,因“检查发现左侧胸腔结节1年余,复诊增大3月余”入院。
2. 辅查
胸部CT增强+3D:
左侧胸腔见一实性结节(8-316),大小约23mm×11mm,宽基底与胸膜相连,增强扫描均匀明显强化。双肺另见散在结节状高密度影,边界清晰,部分为磨玻璃密度,部分为钙质密度,大者位于右肺下叶后基底段(8-344),大小约4mm×3mm,增强扫描未见明确强化。
图1 胸部CT示左侧胸腔见一实性结节(左:横断面;右:冠状面)。
3. 组织病理活检
3.1大体肉眼观:
部分肺组织,35*18*5mm,距切缘5mm,脏层胸膜面见一类圆形灰白结节,25*15*5mm,突出肺脏层胸膜,带蒂样结构,切面灰白,实性质中,与周围分界尚清。
图2 脏层胸膜面见一类圆形灰白结节,突出肺脏层胸膜,带蒂样结构,切面灰白,实性质中,与周围分界尚清。
3.2镜下观:
低倍镜下肺脏层胸膜见一边界清楚的结节,结节内可见不同程度的细胞丰富区与细胞稀疏区交替分布,中倍镜下,瘤细胞排列形式多样,杂乱状、席纹状、波浪状、条索状结构均可见到,肿瘤组织内血管丰富,部分呈血管外皮瘤样结构,部分间质有黏液变性。高倍镜下,细胞丰富区内瘤细胞呈短梭形或卵圆形,胞质较少,核染色质均匀,细胞稀疏区内瘤细胞呈纤细的梭形,细胞间有丰富的粗细不等、形状不一的胶原纤维,有的区域胶原纤维呈粗大的瘢痕疙瘩样,瘤细胞异型性不明显核分裂象罕见。
图3 低倍镜下,肺脏层胸膜见一边界清楚的带蒂部结构的结节。
图4 结节内可见不同程度的细胞丰富区与细胞稀疏区交替分布。
图5 中倍镜下,瘤细胞排列形式多样,杂乱状、席纹状、波浪状、条索状结构。
图6 中倍镜下,肿瘤组织内血管丰富,部分呈“鹿角状”血管外皮瘤样结构。
图7 肿瘤的部分间质有黏液变性。
图8 高倍镜下,细胞丰富区内瘤细胞呈短梭形或卵圆形,,胞质较少,核染色质均匀。
图9高倍镜下,细胞稀疏区内瘤细胞呈纤细的梭形,细胞间有丰富的粗细不等、形状不一的胶原纤维。
3.3免疫组化:
免疫组化示肿瘤细胞胞Vimentin(+++)(图10),CD34(+++)(图11),STAT6(+++)(图12),Catenin(胞膜或/和胞浆染色),ALK(-),CD10(-),CK(-),Desmin(-),S-100(-),SMA(-)。
图10 免疫组化示肿瘤细胞Vimentin(+++)。
图11 免疫组化示肿瘤细胞CD34(+++)。
图12 免疫组化示肿瘤细胞STAT6(+++)。
病理诊断
(左下叶)肺脏层胸膜孤立性纤维性肿瘤。
讨 论
1. 背景
孤立性纤维性肿瘤(solitary fibrous tumor, SFT)是一种纤维起源的软组织肿瘤。胸膜最好发,SFT于1931年首次报道发生于胸膜,此后相继报道可发生于多个解剖部位,包括软组织、皮肤、胃肠道及中枢神经系统等。在2013年骨与软组织肿瘤WHO分类中首次将SFT作为一种肿瘤实体。因其好发于胸膜而被认为是间皮起源,但随后的研究证实其起源于一种CD34阳性的树突状间叶细胞,并向纤维母/肌纤维母细胞分化。
2. SFT的临床病理特征
2.1临床特点
SFT发病的年龄范围5~87岁,高峰年龄为50~60岁,男女比率大致相等。好发于胸膜,其中2/3发生于脏层胸膜,部分可发生于胸膜外,以头颈部、上呼吸道、纵膈、盆腔、腹膜后和周围软组织相对常见,其他部位也可发生,几乎囊括躯体所有的解剖部位。SFT临床症状因发生部位而不同,同时解剖部位与临床生物学行为相关,所产生的临床症状主要是压迫症状,胸膜外SFT比胸膜SFT具有更强的侵袭性行为。临床表现多为生长缓慢的无痛性肿块,常在体检时影像学上偶然发现。
2.2影像学
SFT在影像上表现有一定的特点:(1)单发,有包膜,边界清晰,可塑型或沿着组织间隙生长;(2)CT平扫呈等或稍低密度,增强后大多数动脉期可见特征性"地图样”强化方式,门脉期及延迟期持续强化,呈"快进慢出”表现,部分病灶动脉期瘤内或瘤周可见迁曲增粗血管影;(3)MRI平扫T1WI呈等低信号,T2WI呈等高或混杂信号,增强后低信号区强化,部分瘤内可见流空血管影。
2.3病理学特征
• 肉眼观:
SFT大多境界清楚或有包膜,呈类圆形或卵圆形,位于胸膜者可带蒂样结构,部分病例可有纤维性假包膜,切面灰白色可伴有微囊,肿瘤大小约1~20 cm不等,平均6-8cm,切面灰白色,富于弹性,可伴有黏液样变性。恶性者,切面呈鱼肉样,可见出血、坏死及囊性变。
• 镜下观:
组织形态学上,根据肿瘤成分及细胞形态不同可分为多种亚型,其中常见的为经典型。经典型SFT肿瘤排列形式多样,肿瘤细胞主要由密集区与稀疏区交替分布,密集区细胞呈短梭形或卵圆形,胞质稀少;稀疏区瘤细胞呈长梭形,胞质较丰富,两种细胞均无明显异型性。细胞间含丰富的胶原纤维束,明显时可呈瘢痕疙瘩样。肿瘤组织内血管丰富,部分呈血管外皮瘤样结构。
少数SFT肿瘤可以富于细胞、出现巨细胞围绕假血管样腔隙 (巨细胞型)、瘤内出现成熟脂肪组织 (成脂型)、瘤内见密集成簇的上皮样卵圆形细胞、瘤组织黏液变性等。
• 具体分型如下:
经典型SFT:肿瘤边界清晰,由交替性分布的细胞丰富区和细胞稀疏区组成;细胞丰富区内,瘤细胞呈短梭形或卵圆形,胞浆少或不清,核染色质均匀,细胞稀疏区瘤细胞呈纤细的梭形,瘤细胞无明显异型性,核分裂像也不多见;
非经典型者:瘤细胞多呈无结构或无模式性生长,常见的排列方式有杂乱状、席纹状、鱼骨样、血管外皮瘤样、栅栏状或波浪状;发生于肺、前列腺、精囊等实质脏器者可有原有的上皮性结构,与SFT形成分叶状瘤样结构,也可表现为瘤细胞含有粗细不等、形状不一的胶原纤维,可呈瘢痕疙瘩样;瘤内血管丰富,血管壁胶原变性明显,间质黏液样变性;
巨细胞型SFT:在经典型SFT基础上可见一些扩张的假血管瘤样或血窦样腔隙,腔隙周围可见散在核深染多核巨细胞;
脂肪瘤样SFT:富含脂肪组织的SFT;
非典型和恶性SFT:约10%病例中,除了含有经典型SFT外,还含有不典型区域,表现为细胞密度增加,核异型性明显,核分裂像易见,常常>4个/10HPF,并可见出血及坏死;恶性者体积相对较大,直径常>10cm,肿瘤内除良性SFT区域外,还含有高度恶性的肉瘤区域,可呈分化较差的上皮细胞样、圆细胞性或梭形细胞肉瘤,还可伴有骨肉瘤或横纹肌肉瘤样异源性分化,称之为去分化SFT。·
第5版WHO软组织肿瘤中建议对SFT进行危险度分级,预测肿瘤的转移风险。国外有学者根据患者年龄、肿瘤大小、核分裂像对SFT进行评分并进行危险度分级:分为低危型(0~2分)、中危型(3~4分)和高危型(5~6分)。
2.4免疫表型:
STAT6免疫组化染色已成为NAB2-STAT6基因融合的有用的替代标记物,在恶性SFT中也能表达,并且仅为核表达,而在其他肿瘤中可能同时显示核和细胞质阳性。其次是CD34、Bc1-2和CD99,其中CD34在大约95%~100%的病例中呈阳性表达。偶尔CD34阴性见于恶性和去分化SFT的病例中,Bc1-2和CD99虽然敏感性亦较高,但诊断特异性差。
2.5分子遗传学:
NAB2和STAT6两个基因的融合认为是导致SFT发生的主要原因,它们均位于12号染色体彼此非常接近,因此用荧光原位杂交(FISH)技术很难检测到其融合,许多研究通过高通量测序技术(NGS)和聚合酶链式反应(PCR)技术发现两个基因在SFT中反复融合。
3. 鉴别诊断
胸膜SFT主要应与以下肿瘤相鉴别:
(1)炎性肌纤维母细胞瘤:主要由梭形的肌纤维母细胞及炎症细胞混合而成,间质内伴有大量的炎症细胞,多为成熟的浆细胞、淋巴细胞和嗜酸性粒细胞,少数为中性粒细胞。瘤细胞弥漫表达Vimentin,多数病例表达α-SMA和Desmin,ALK常阳性表达。
(2)平滑肌瘤:主要发生于女性,由形态一致的梭形细胞呈漩涡状、编织状排列而成,免疫表型h-caldesmon、SMA、结蛋白阳性。
(3)神经鞘瘤:主要由梭形细胞呈栅栏状排列,可见verocay小体,肿瘤由排列有序、交替分布的富于细胞性束状区和疏松黏液样网状区组成,瘤细胞呈梭形,核两端尖;瘤细胞表达S-100,SOX10,Vimentin等,肿瘤富于细胞区CD34为阴性。
(4)滑膜肉瘤(单相型):由致密片状或条束状排列的形态一致的梭形细胞组成,细胞相对温和,30%的病例间质可见钙化,对诊断有提示作用。免疫组化常表达CK,EMA,TLE1,CD56,CD99,不表达CD34,SMA,Desmin,Syn和TTF1。
(5)胃肠道间质瘤:梭形细胞型,排列方式多样,可呈交织短条束状或旋涡状排列或鱼骨样等,瘤细胞常表达CD117和DOG-1。
(6)血管平滑肌脂肪瘤:梭形细胞围绕畸形的厚壁血管呈束状排列为其主要特征, 脂肪成分簇状或散在分布在周围, 免疫组织化学特征性地表达HMB45和Melan-A, 不表达CD34和STAT6。
(7)隆突性皮肤纤维肉瘤:发病部位常常表浅,与皮肤关系密切,瘤细胞呈单调一致的席纹状排列为主,也可见血管外皮瘤样结构,肿瘤边界不清,在脂肪组织内呈蜂窝状浸润性生长,CD34弥漫阳性,但STAT6阴性,分子遗传学表现为COLIA1-FDGFB基因融合。
4.治疗及预后
手术切除是治疗SFT的主要手段,对于高危险度和晚期转移的病例,可采取放疗和化疗等辅助手段。低危型肿瘤无转移和因肿瘤死亡的潜能,中危型肿瘤5年无转移率达77%,高危型5年无转移率达15%。
参考文献
,等.肺实质内孤立性纤维性肿瘤1例及相关文献复习[J].临床肺科杂志,2024,29(12):1936-1938.
[3]龙卫国,李梅,郑芳,等.11例孤立性纤维性肿瘤的临床病理分析[J].临床肿瘤学杂志,2024,29(02):178-182.
[4]周享媛,文庆怡,邹弯弯,等.孤立性纤维性肿瘤的影像学表现及病理分析[J].实用癌症杂志,2021,36(04):676-679+696.
[5]Demicco EG, Wagner MJ, Maki RG, Gupta V, Iofin I, Lazar AJ, Wang WL. Risk assessment in solitary fibrous tumors: validation and refinement of a risk stratification model. Mod Pathol. 2017 Oct;30(10):1433-1442. doi: 10.1038/modpathol.2017.54.
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